Продукты переработки Pleurotus ostreatus как источники БАВ

       Стимуляция роста культуры вешенки  была от 10^-5 до 10^-4 мг/мл. По внешним признакам мицелиальной колонии были  ровные с равномерной скоростью роста, пигментации не наблюдалось.

     При дальнейшем увеличении количества солей  в среде проявлялись их ингибирующие свойства, усиливаясь при значении последних от 10^-3 до 10^-2 мг/мл.  Колонии становились рыхлыми, обладали неравномерным ростом. В концентрации 10^-1 мг/мл наблюдалось полное ингибирование роста мицелия, негустые колонии имели различные пигментные пятна, слабо заметные гифы. Действие катионов металлов наиболее выражено на 7 день инкубации, превышая контрольные образцы по скорости роста в 1,7 раза в случае Mg²⁺, Cu²⁺, и в 1,3  раза в случае Fe²⁺. При этом сокращаются сроки прорастания мицелия на среде : контрольный образец – 11 дней, опыт ( катионы Mg²⁺, Cu²⁺, Fe²⁺) – 7 дней. Образцы с катионами Zn²⁺ были сравнимы с контрольными.

     Можно отметить, что по отношению к другим катионам Fe²⁺ в концентрации 10^-2 и 10^-1 мг/мл приводили к более быстрому ингибированию роста 3,1 раза по сравнению с контролем, в 1,6-2,6 раза катионы Mg²⁺, Cu²⁺ в 1,1 раза с Zn²⁺ .

     Таким образом, концентрации  катионов Mg²⁺, Cu²⁺, Fe²⁺, Zn²⁺ 10^-4 мг/мл являются наиболее оптимальными для роста мицелия и, следовательно, физиологически значимыми.

       Данный факт необходимо учитывать  при приготовлении субстратных  блоков вешенки обыкновенной, используя  водопроводную воду с концентрацией катионов металлов, не превышающими  вышеуказанные.

     В дальнейшем отдельные соли заменили препаратом МПК, выпускаемым нашей  промышленностью, в состав которого входят следующие ионы Mg²⁺, Cu²⁺, Fe²⁺, Zn²⁺ , эксперимент проводили на агаризованной среде. Причем МПК вносили только в агаризованную среду до автоклавирования.

     Таким образом, оптимальной концентрацией  МПК было 10^-4 -10^-3 мг/мл, при этом наблюдалось увеличение скорости роста в 1,21 раза по сравнению с контролем. Колонии плотные, рост равномерный, центричный, гифы четко различимы. Пигментации не наблюдалось.

     Повышение количества МПК в агаризованной  среде приводило ингибированию  роста мицелия в 1,71 раза при концентрации 1*10^-7 к  мг/мл. При этом появляется пигментация аналогичная варианту с катионами железа. Колония рыхлая, рост неравномерный, гифы паутинистые.

       Таким образом, из проведенных экспериментов можно сделать вывод, что для нормального протекания ростовых процессов необходимо нормальное минеральное питание, которое достигается внесением в среду минеральных элементов таких как: катионы к Mg²⁺, Cu²⁺, Fe²⁺, Zn²⁺. Возможно, содержание этих элементов в среде позволит получать высококачественный посевной материал [13]. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

ВЫВОД

     Рассмотрела органический и минеральный состав субстратов, используемых для выращивания Вешенки обыкновенной. После детального изучения количественных  изменений в составах  различных видов субстратов в процессе культивирования гриба, определила возможное применение в медицине продуктов переработки растительных субстратов после плодоношения Pleurotus ostreatus в качестве ценного сырья для производства лечебно-профилактических и лекарственных веществ с широким спектром действия. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

ЛИТЕРАТУРА

1. Вешенка обыкновенная// И.А.Дудка, В.А.Шека, С.П.Вессер и др.-Киев: Наукова думка, 1976.-С. 20-27.
2. Бисько Н.А., Фомина В.И., Билай В.Т. Разрушение древесины грибом Pleurotus ostreatus //Микология и фитопатология.-1983.-17, №13- С. 199-202.
3. Бисько Н.А., Косман Е.Г. Изучение роста культивируемых штаммов вешенки обыкновенной на различных источниках углерода и азота// II Всесоюз. совещ. «Производство высших съедобных грибов в СССР»:Тез.докл.-Киев:Наук.думка, 1985.- С.90-92.
4. Бисько Н.А., Фомина В.И., Билай В.Т., Володина Е.П. Особенности изменения химического состава субстрата при культивировании Pleurotus ostreatus// Микология и фитопатология.-1986.-20,№5-С 392-395.
5. Грибы и грибоводство//Авт.-сост.П.А.Сычев, Н.П.Ткаченко; под общ.ред. П.А.Сычева.-Д.: Издательство «Сталкер», 2003.-С.298-313.
6. Бисько Н.А., Володина Е.Г., Билай В.Т. Влияние культивирования съедобного гриба Pleurotus ostreatus на химический состав субстрата // II Респ. науч. семинар «Превращение древесины при микробиологическом и энзиматическом воздействиях» : Тез.докл.-Рига: Зинатне, 1985.-С. 187-191.
7. Бисько Н.А., Дудка И.А., Шевченко С.В. Культивирование вешенки обыкновенной экстенсивным способом на пнях и отрубках // Раст.ресурсы.-1982.-18 №13.-С. 407-411.
8. Кошнер М., Ганек Н. Определение содержания клетчатки в растительных субстратах//Методы биохимических анализов.-М.:Наука,1974.С. 15-17.
9. Низковская О.П., Панькова И.М., Кочетова Г.И., Мануковский Н.С. Окисление лигнина пшеничной соломы базидомицетами// Микология и фитопатология.-1984.-18,№2-С 133-135.
10. Родионова Н.А., Тиунова Н..А., Денисова Р.В. и др. Метод определения целлюлазной активности // Прикл. биохимия и микробиология. – 1996. – 2, №2.- С.197-205.
11. Бойко М.И., Дудка И.А.//Достижения, проблемы и перспективы культивирования грибов.- Донецк, 2005.-С.45-50.
12. Грибы - пища будущего/С.Малюта // Зеркало недели.,2002.- № 34 (409) 7.
13. Биология и культивирование съедобных грибов рода Вешенка.-Киев: Наукова думка, 1987.-С. 85-117, 129-130, 132-133.