Контроль качества стерилизации

Контроль качества автоклавирования осуществляют: 1) бактериологическим методом — постоянные пробы па стерильность материала; 2) с помощью индикаторных бумажек (метод Микулича)—на обработанной крахмалом бумаге пишут слово «стерилизовано» и опускают бумагу в раствор Люголя. Она принимает интенсивно-синий цвет, и надпись становится невидна.

При 115 °С в автоклаве бумага обесцвечивается, и слово «стерилизовано» становится отчетливо видимым; 3) с помощью порошкообразных веществ, сплавляющихся при достижении определенной температуры: сера — 111 —120 СС, антипирин — 113°С, антифебрин — 115°С, мочевина — 132 °С.

Качество обработки  хирургических инструментов, шприцев, игл и частей аппаратов определяют как проверкой их стерильности, так  и путем постановки бепзидшювой пробы на наличие следов крови,

Бензидиновый реактив годен только в течение часа. В шприц наливают 3 капли бензидннового реактива и несколько раз передвигают поршень, результат оценивается через 3 мин. При наличии малейших следов кровн реактив становится зеленым. Иглы проверяют таким же образом. Через 3 мин реактив выпускают на белую ткань или бумагу; изменение окраски реактива свидетельствует о наличии следов крови.

Приготовление бензидинового реактива: в пробирку наливают 2 мл ледяной уксусной кислоты,- добавляют немного бензидина и встряхивают смесь, затем добавляют 4 мл 3 % раствора перекиси водорода и снова тщательно встряхивают. Качество реактива проверяют нанесением 2 его капель на кровяное пятно. Появление зеленого цвета свидетельствует о пригодности реактива.

Контроль стерильности проводится не реже одного раза в 10—14 дней. Посевы с рук хирургов и операционных сестер, инструментов и различных предметов в операционной берут стерильными ватными или марлевыми шариками, смоченными стерильным изотоническим раствором натрия хлорида непосредственно перед операцией. Материал помещают в пробирку со стерильным изотоническим раствором натрия хлорида или сахарным бульоном и в тот же день направляют в бактериологическую лабораторию. Персонал не должен знать, когда и у кого будет   взят   посев.

Посевы воздуха  в операционной осуществляют на чашках Петри с питательным агаром или с помощью аппарата Кротова. Открытые чашки расставляют в различных местах операционной на 15 мин. Количество микробов в 1 м3 воздуха в операционной до работы не должно превышать 500,-а после работы — 1000.

Перевязочный  материал доставляют в лабораторию  в закрытых биксах после стерилизации.

Посевы с шовного  материала осуществляют до стерилизации, во время нес и в процессе хранения — не реже одного раза в 10 дней. Забор  материала проводится с соблюдением всех правил асептики. Каждую пробу берут отдельным инструментом и помещают в стерильную пробирку. Материал признается стерильным, если рост микробов не получен.

Результаты посевов  фиксируют в специальном журнале, где указывают дату посева, характер исследуемого материала, способ стерилизаций, отмечают полученный результат и указывают фамилию производившего исследование.